Как выбрать насос фекальный: рейтинг топ-10 по версии КП

рейтинг топ-10 по версии КП

Для удаления нечистот обычно используется септик, в крайнем случае — выгребная яма. Их периодически очищают, вызывая специальную вакуумную машину. Но это недешёвая операция, гораздо экономнее и надёжнее перекачивать содержимое в ближайшую канализационную сеть. Для этого используют насосы особой конструкции, так называемые «фекальные». Они также пригодны и для того, чтобы удалять остатки пищи и другие нетвёрдые отходы.

Рейтинг топ-10 по версии КП

QUATTRO ELEMENTI ПРОФ Sewage 1100F Ci-Cut

QUATTRO ELEMENTI ПРОФ Sewage 1100F Ci-Cut. Фото: market.yandex.ru

Надежный и выносливый агрегат с вертикальной установкой, оснащённый измельчителем, поплавковым выключателем, а также защитой от сухого хода и перегрева. Перекачивает жидкость с твердыми частицами диаметром до 15 мм. Гарантия производителя — 1 год.

Спецификации

Плюсы и минусы

Измельчитель, чугунный рабочий диск из чугуна

Пластиковый патрубок для шланга

STURM WP9775SW

STURM WP9775SW. Фото: market.yandex.ru

Перекачивает жидкость с твёрдыми частицами диаметром до 35 мм. Напор позволяет использовать насос с глубокими септиками. Имеет защиту от сухого хода и перегрева. Гарантия производителя — 14 месяцев.

Спецификации

Плюсы и минусы

Полностью чугунный корпус, стальная крыльчатка, тихая работа

Высокое расположение ножа

Беламос DWP 1100 DWP 1100 CS

Беламос DWP 1100 DWP 1100 CS. Фото: market.yandex.ru

Центробежный насос с ножом, измельчающим частицы диаметром до 12 мм. Корпус и рабочее колесо чугунные. Имеются защиты от сухого хода и перегрева. Гарантия производителя — 1 год.

Спецификации

Плюсы и минусы

Чугунные корпус и крыльчатка

Большой вес

Джилекс ФЕКАЛЬНИК 260/10 Н

Джилекс ФЕКАЛЬНИК 26010 Н. Фото: market.yandex.ru

Невысокая потребляемая мощность — преимущество данного агрегата при использовании на даче, где электросеть обычно слабая. Максимальный диаметр твердых частиц — 35 мм. Корпус из нержавеющей стали, внутренние подшипники самосмазывающиеся и не требуют обслуживания.

Спецификации

Плюсы и минусы

Мощный, тихий, надежный

Случается короткое замыкание двигателя

Pedrollo BCm 15/50 (MCm 15/50) (1100 Вт)

Pedrollo BCm 1550 (MCm 1550) (1100 Вт). Фото: market.yandex.ru

Мощный агрегат перекачивает грязную воду с частицами диаметром до 50 мм. Рабочее колесо и корпус из чугуна. Имеется защита от сухого хода и перегрева.

Спецификации

Мощность	1100 Вт
Производительность	48 куб. м/ч
Напор	16 м
Глубина погружения	5 м
Вес	7,6 кг

Плюсы и минусы

Качественная сборка, тихая работа

Случаются частые остановки при работе

WWQ NB-1500GM

WWQ NB-1500GM. Фото: market.yandex.ru

Мощный дренажно-фекальный насос, оборудованный измельчителем. Изготовлен из нержавеющей стали и чугуна. Рабочее колесо отделено от электродвигателя масляной камерой с механическими уплотнителями. Насос оснащён автоматикой с защитой от сухого хода и перегрева и рассчитан на долгую непрерывную эксплуатацию. Гарантия производителя — 1 год.

Спецификации

Плюсы и минусы

Высокая производительность, качественные материалы

Поплавковый выключатель настроен на слишком высокий уровень жидкости

Вихрь ФН-2200Л 68/5/6

Вихрь ФН-2200Л 6856. Фото: market.yandex.ru

Насос может использоваться в постоянном режиме для очистки септиков. Двигатель допускает до 20 включений/выключений в час. Твердые частицы диаметром до 15 мм измельчаются стальным ножом. Гарантия производителя — 1 год.

Спецификации

Плюсы и минусы

Постоянная скорость перекачки, отличный нож, корпус не корродирует

Не обнаружено

JEMIX GS 400 (400 Вт)

JEMIX GS 400 (400 Вт). Фото: market.yandex.ru

Компактный недорогой насос для временных туалетов на даче или в кемпинге. Корпус пластиковый. Оснащен поплавковым датчиком для защиты от сухого хода.

Спецификации

Мощность	400 Вт
Производительность	7,7 куб. м/ч
Напор	5 м
Глубина погружения	5 м
Вес	7,6 кг

Плюсы и минусы

Маленький вес, недорогой, компактный

Слабый, плохо качает сильно загрязненную жидкость

UNIPUMP FEKACUT V1300DF (1300 Вт)

UNIPUMP FEKACUT V1300DF (1300 Вт). Фото: market.yandex.ru

Надёжный аппарат, предназначенный для откачки отвода канализационных вод без волокнистых включений. Хорошо показал себя при работе в небольших септиках.

Спецификации

Плюсы и минусы

Высокая производительность, тихая работа

Не обнаружено

Калибр НПЦ-1100У Aqua Line

Калибр НПЦ-1100У Aqua Line. Фото: market.yandex.ru

Недорогая модель для временного использования на даче. Перекачивает жидкость с частицами размером до 40 мм. Оснащена защитой от сухого хода и перегрева. В комплекте универсальный патрубок для шлангов разного диаметра.

Спецификации

Плюсы и минусы

В комплекте переходники на разные шланги, тихая работа

Плохо справляется с вязкой жидкостью

Как выбрать фекальный насос для канализации

Выбор фекального насоса — нетривиальная задача, хотя, на первый взгляд, весьма простая. «Комсомольская правда» попросила Максима Соколова, эксперта онлайн-гипермаркета «ВсеИнструменты.ру» рассказать о нюансах выбора. Но для начала давайте разберёмся, как устроен такой насос и какие бывают виды таких насосов.

Устройство фекальных насосов

Специфические условия работы данного оборудования диктуют его конструктивные особенности. Необходимо, чтобы он как можно реже выходил из строя и надёжно работал без профилактики. По сути, это циркуляционный самовсасывающий насос с дополнительными элементами.

Измельчитель нечистот установлен перед рабочей камерой и оснащён ножами из нержавеющей стали. Его задача — не допустить попадания крупных фракций в насос и отводящий патрубок. Особенно важно это устройство в канализационных системах кафе и ресторанов, в которых остатки пищи способны намертво забить отводящую трубу её очистка потребует значительных усилий и затрат. Насос для очистки домашнего септика может обойтись и без измельчителя.

Уплотнители и масляная камера

Охлаждение обычного насоса происходит перекачиваемой водой. Среда, где работает фекальный насос, не настолько теплопроводна, и устройство может перегреться. Во избежание аварии в конструкции есть так называемая масляная камера между электродвигателем и рабочей камерой, где вращается крыльчатка и создаётся необходимое давление. Вал проходит через наполненную машинным маслом ёмкость, уплотнители-сальники с обеих сторон перекрывают возможность проникновения нечистот к электродвигателю.

Типы фекальных насосов

В соответствии с конструктивными особенностями фекальные насосы подразделяются на следующие типы:

• Погружные аппараты опускаются на тросе на дно канализационного колодца, септика или выгребной ямы. Они устанавливаются вертикально, входной патрубок находится снизу, выходной подсоединен к трубе, выходящей на поверхность. Конструкция таких аппаратов максимально прочная и долговечная, корпус и крыльчатка сделаны, как правило, из толстого химически нейтрального пластика. Подобные насосы комплектуются поплавковым датчиком, необходимым для отключения электродвигателя при падении уровня жидкости ниже определенного уровня.
• Полупогружные насосы сконструированы так, что рабочая камера находится ниже уровня жидкости, а электродвигатель — над ней. Иногда они оснащены режущим механизмом. Подобные агрегаты предназначены для использования в выгребных ямах.
• Поверхностные фекальные насосы стоят на земле и всасывают нечистоты через погружённый в них патрубок. Максимальный размер твердых частиц для таких насосов — до 5 мм, их мощность невелика. Но габариты устройства невелики, и стоимость заметно ниже, чем у полностью погружных моделей.

На что обратить внимание при выборе фекального насоса

Основные факторы, которые определяют выбор той или иной модели фекального насоса:

• Постоянное обслуживание частной канализационной системы с выгребной ямой или септиком возможно только путём установки погружного, в крайнем случае полупогружного агрегата. Если же насос включается изредка, например, на даче, то достаточно поверхностной конструкции.
• Объём перекачиваемых нечистот определяется исходя из объёма емкости и скорости её заполнения. Для предотвращения работы «всухую» обязателен поплавковый датчик.
• Глубина погружения определяется глубиной септика или выгребной ямы. Этот параметр обязательно указан в паспорте прибора, выбирать нужно модель, которая соответствует реальным условиям работы.
• Максимальная температура жидкости тоже записана в паспорте устройства.
• Измельчитель крупных частиц. В объёме канализационных вод могут содержаться достаточно крупные фрагменты, способные заклинить крыльчатку и перекрыть выходной патрубок. Продлить срок службы насоса поможет измельчитель на входе.

Фекальный насос необходим для организации комфортабельной жизни в частном доме. Описанные здесь модели пригодны только для бытовых нужд, на мощных городских очистных сооружениях используется совсем другая техника. Но без бытового фекального насоса организовать комфортный быт в частном доме вдали от цивилизации никогда не получится.

конструкция, типы устройств, нюансы и детали

Обустройство канализационной системы в частном доме – одна из задач первой необходимости. Правильно организованный отвод сточных вод способен сделать пребывание на даче комфортным и приятным. Такие современные устройства, как, например, фекальные насосы, позволяют быстро и эффективно откачивать отходы, делая туалет на даче чистым и благоуханным.

Главная задача фекального насоса для канализации – откачка фекальных масс. В отличие от дренажных насосов, фекальные не имеют фильтра, а для переработки и измельчения  крупных частиц (до 8 см) и комков бумаги в нижней части устройства имеется специальный режущий механизм.

Для длительной эксплуатации фекальных насосов большое значение имеет материал, из которого они изготовлены. Постоянное воздействие на прибор агрессивной среды может приводить к быстрому выходу его из строя, если он будет сделан из дешевого и ненадежного материала. Поэтому фекальные насосы производят исключительно из нержавейки, что придает им прочность и антикоррозионные свойства.

Для обустройства дачных участков вполне подойдет фекальный насос с диаметром выпускного отверстия 4–8 см, но не меньше, иначе засорения труб не избежать.

Кроме того, следует обращать внимание на то, к какому типу по способу установки относится модель насоса:

1. Погружная – полностью  опускается в сточные воды.
2. Полупогружная – погружена в стоки лишь нижней частью, верхняя находится на поверхности.
3. Поверхностная (наружная) – устанавливается в защищенном месте, например, в строении рядом со сточной ямой. Преимуществами такого устройства являются его: мобильность, более экономное потребление электроэнергии, недорогая цена. Единственное требование к месту установки наружного фекального насоса – температура зимой там не должна быть ниже 0 град.

Фекальные насосы могут быть предназначены для откачивания холодных (температура не превышает 40 град.) либо горячих (температура до 90 град.) стоков. Второй случай идеален, если в частом доме есть сауна или баня, оборудованная туалетом.

На что обратить внимание при выборе фекального насоса

Выбирая насос для канализации, обязательно учитывайте следующее:

• высоту подъема стоков;
• необходимое расстояние транспортировки стоков;
• средний объем стоков а сутки; 
• мощность плюс производительность насоса;
• горизонтальная или вертикальная ориентация агрегата;
• строение режущего механизма – это может быть кромка или ножи,  и т. д.

Эффективным и одновременно экономным выбором для дачного дома будет полностью погружной фекальный насос с небольшой мощностью(до 40 киловатт). Такой агрегат обеспечит быструю перекачку сточных вод, перерабатывая около 400 м куб. стоков в час, поднимая их на высоту до 20 м.

Для частного дома также можно рассмотреть и вариант полупогружного устройства. Если для больших объемов стоков такой насос может быть слабоват, то в бытовых целях его мощности вполне хватит для эффективного отведения и переработки содержимого выгребной ямы. Диаметр частиц при этом не должен превышать 15 мм, однако для оптимизации данного параметра всегда можно установить перемалывающий механизм.

Для стоков с размером плотных частиц не более 5 мм можно приобрести поверхностный фекальный насос. Такие устройства не очень мощные, зато имеют другие достоинства – они мобильны, легки в транспортировке и монтаже, недороги.

Учитывая все особенности разных типов фекальных насосов, Вы теперь с легкостью сможете выбрать подходящий вариант для своего частного дома.

Трансплантация фекальной микробиоты: скрининг и выбор для выбора оптимального донора , и другие. Микробиота кишечника и здоровье хозяина: новый клинический рубеж. Кишка. 2016;65:330–339. doi: 10.1136/gutjnl-2015-309990. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

2. Биббо С., Яниро Г., Гасбаррини А., Каммарота Г. Трансплантация фекальной микробиоты: прошлое, настоящее и будущее. Минерва Гастроэнтерол. Диетол. 2017;63:420–430. [PubMed] [Академия Google]

3. Du H., Kuang T.T., Qiu S., Xu T., Gang Huan C.L., Fan G., Zhang Y. Фекальные лекарства, используемые в традиционной медицинской системе Китая: систематический обзор их названий, исходных видов, традиционное использование и современные исследования. Подбородок. Мед. 2019;14:31. doi: 10.1186/s13020-019-0253-x. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

4. Бороди Т.Дж., Уоррен Э.Ф., Лейс С.М., Сурас Р., Ашман О., Сиаракас С. Бактериотерапия с использованием фекальной флоры: игра с движениями человека. Дж. Клин. Гастроэнтерол. 2004; 38: 475–483. дои: 10.1097/01.мкг.0000128988.13808.дц. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

5. Гасбаррини Г., Бонвичини Ф., Граменци А. История пробиотиков. Дж. Клин. Гастроэнтерол. 2016;50:С116–С119. doi: 10.1097/MCG.0000000000000697. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

6. Eiseman B., Silen W., Bascom G.S., Kauvar A.J. Фекальная клизма как вспомогательное средство при лечении псевдомембранозного энтероколита. Операция. 1958; 44: 854–859. [PubMed] [Google Scholar]

7. Schwan A., Sjolin S., Trottestam U., Aronsson B. Рецидивирующий Clostridium difficile энтероколит, вылеченный ректальным введением гомологичных фекалий. Ланцет. 1983;2:845. doi: 10.1016/S0140-6736(83)90753-5. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

8. Van Nood E., Vrieze A., Nieuwdorp M., Fuentes S., Zoetendal E.G., de Vos W.M., Visser C.E., Kuijper E.J., Bartelsman J.F., Tijssen J.G., и другие. Дуоденальное вливание донорского кала при рецидивах Clostridium difficile. Н. англ. Дж. Мед. 2013; 368: 407–415. doi: 10.1056/NEJMoa1205037. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

9. Cammarota G., Masucci L., Ianiro G., Bibbo S., Dinoi G., Costamagna G., Sanguinetti M., Gasbarrini A. Рандомизированное клиническое исследование: фекальное трансплантация микробиоты с помощью колоноскопии по сравнению с ванкомицином для лечения рецидивирующей инфекции Clostridium difficile. Алимент. Фармакол. тер. 2015;41:835–843. doi: 10.1111/apt.13144. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

10. Янгстер И., Рассел Г.Х., Пиндар К., Зив-Баран Т., Саук Дж., Хохманн Э.Л. Пероральная, капсулированная, замороженная трансплантация фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile. ДЖАМА. 2014; 312:1772–1778. doi: 10.1001/jama.2014.13875. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

11. Каммарота Г., Яниро Г., Тилг Х., Раджилич-Стоянович М., Кумп П., Сатокари Р., Сокол Х., Арккила П., Пинтус С. ., Харт А. и др. Европейская консенсусная конференция по трансплантации фекальной микробиоты в клинической практике. Кишка. 2017;66:569–580. doi: 10.1136/gutjnl-2016-313017. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

12. Lee C.H., Steiner T., Petrof E.O., Smieja M., Roscoe D., Nematallah A., Weese J.S., Collins S., Moayyedi P. ., Кроутер М. и др. Трансплантация замороженной и свежей фекальной микробиоты и клиническое разрешение диареи у пациентов с рецидивирующей инфекцией Clostridium difficile: рандомизированное клиническое исследование. ДЖАМА. 2016; 315:142–149. doi: 10.1001/jama.2015.18098. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

13. Cammarota G., Ianiro G., Kelly C.R., Mullish B.H., Allegretti J.R., Kassam Z., Putignani L., Fischer M., Keller J.J., Costello S.P., et al. Международная консенсусная конференция по банкам стула для трансплантации фекальной микробиоты в клинической практике. Кишка. 2019;68:2111–2121. doi: 10.1136/gutjnl-2019-319548. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

14. Cavaillon J.M., Legout S. Столетие со дня смерти Эли Мечникова: провидец и выдающийся руководитель группы. микробы заражают. 2016; 18: 577–594. doi: 10.1016/j.micinf.2016.05.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

15. Вандана Ю.К., Барласкар Н.Х., Гульзар А.Б.М., Ласкар И.Х., Кумар Д., Пол П., Пандей П., Мазумдер П.Б. Связь микробиоты кишечника с заболеваниями человека. Биоинформация. 2020;16:196–208. doi: 10.6026/97320630016196. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

16. Иебба В., Тотино В., Гальярди А., Сантанджело Ф., Каччиотти Ф., Транскассини М., Манчини К., Чичероне К. , Корацциари Э., Пантанелла Ф. и др. Эубиоз и дисбиоз: две стороны микробиоты. Новый микробиол. 2016;39: 1–12. [PubMed] [Google Scholar]

17. Lozupone C.A., Stombaugh J.I., Gordon J.I., Jansson J.K., Knight R. Разнообразие, стабильность и устойчивость микробиоты кишечника человека. Природа. 2012; 489: 220–230. doi: 10.1038/nature11550. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

18. Янг В.Б., Шмидт Т.М. Обзор микробиоты желудочно-кишечного тракта. Доп. Эксп. Мед. биол. 2008; 635: 29–40. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

19. Линь Л., Чжан Дж. Роль кишечной микробиоты и метаболитов в гомеостазе кишечника и заболеваниях человека. БМС Иммунол. 2017;18:2. doi: 10.1186/s12865-016-0187-3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

20. Forbes J.D., Chen C.Y., Knox N.C., Marrie R.A., El-Gabalawy H., de Kievit T., Alfa M., Bernstein C.N., Van Domselaar G. Сравнительное исследование микробиоты кишечника при иммуноопосредованных воспалительных процессах. болезни-существует ли распространенный дисбактериоз? Микробиом. 2018;6:221. doi: 10.1186/s40168-018-0603-4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

21. Аллегретти Дж. Р., Маллиш Б. Х., Келли С., Фишер М. Эволюция использования трансплантации фекальной микробиоты и новые терапевтические показания. Ланцет. 2019;394:420–431. doi: 10.1016/S0140-6736(19)31266-8. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

22. Леффлер Д. А., Ламонт Дж.Т. Clostridium difficile Инфекция. Н. англ. Дж. Мед. 2015; 373: 287–288. doi: 10.1056/NEJMra1403772. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

23. Десаи К., Гупта С.Б., Дубберке Э.Р., Прабху В.С., Браун С., Маст Т.С. Эпидемиологическое и экономическое бремя Clostridium difficile в Соединенных Штатах: оценки на основе моделирования. Заражение BMC. Дис. 2016;16:303. дои: 10.1186/s12879-016-1610-3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

24. McDonald L.C., Gerding D.N., Johnson S., Bakken J.S., Carroll K.C., Coffin S.E., Dubberke E.R., Garey K.W., Gould C.V., Kelly C. , и другие. Клинические практические рекомендации по инфекции Clostridium difficile у взрослых и детей: обновление 2017 г., подготовленное Американским обществом инфекционистов (IDSA) и Американским обществом медицинской эпидемиологии (SHEA) Clin. Заразить. Дис. Выключенный. Опубл. Заразить. Дис. соц. Являюсь. 2018;66:987–994. doi: 10.1093/cid/ciy149. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

25. Кумар В., Фишер М. Экспертное мнение о трансплантации фекальной микробиоты для лечения инфекции Clostridioides difficile и не только. Мнение эксперта. биол. тер. 2020;20:73–81. doi: 10.1080/14712598.2020.1689952. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

26. Каммарота Г., Яниро Г., Магалини С., Гасбаррини А., Гуи Д. Снижение хирургического вмешательства при инфекции Clostridium difficile после запуска программы по пересадке фекальной микробиоты. Анна. Стажер Мед. 2015; 163: 487–488. дои: 10.7326/L15-5139. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

27. Бриттон Р.А., Янг В.Б. Взаимодействие между кишечной микробиотой и хозяином при устойчивости к колонизации Clostridium difficile. Тенденции микробиол. 2012;20:313–319. doi: 10.1016/j.tim.2012.04.001. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

28. Bibbo S., Lopetuso L.R., Ianiro G., Di Rienzo T., Gasbarrini A., Cammarota G. Роль микробиоты и врожденного иммунитета при рецидивах Clostridium difficile инфекция. Дж. Иммунол. Рез. 2014;2014:462740. doi: 10.1155/2014/462740. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

29. Вайнгарден А.Р., Чен С., Бобр А., Яо Д., Лу Ю., Нельсон В.М., Садовски М.Дж., Хоруц А. Трансплантация микробиоты восстанавливает нормальный состав фекальных желчных кислот при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile. Являюсь. Дж. Физиол. Гастроинтест. Физиол печени. 2014; 306:G310–G319. doi: 10.1152/jpgi.00282.2013. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

30. Weingarden A., Gonzalez A., Vazquez-Baeza Y., Weiss S., Humphry G., Berg-Lyons D., Knights D. , Унно Т., Бобр А., Канг Дж. и др. Динамические изменения краткосрочного и долгосрочного бактериального состава после трансплантации фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile. Микробиом. 2015;3:10. doi: 10.1186/s40168-015-0070-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

31. Кураиши М.Н., Видлак М., Бхала Н., Мур Д., Прайс М. , Шарма Н., Икбал Т.Х. Систематический обзор с метаанализом: эффективность трансплантации фекальной микробиоты для лечения рецидивирующей и рефрактерной инфекции Clostridium difficile. Алимент. Фармакол. тер. 2017; 46: 479–493. doi: 10.1111/apt.14201. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

32. Яниро Г., Майда М., Буриш Дж., Симонелли К., Холд Г., Вентимилья М., Гасбаррини А., Каммарота Г. Эффективность различной фекальной микробиоты протоколы трансплантации при инфекции Clostridium difficile: систематический обзор и метаанализ. Объединенный евро. Гастроэнтерол. Дж. 2018;6:1232–1244. doi: 10.1177/2050640618780762. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

33. Дебаст С.Б., Бауэр М.П., ​​Куйпер Э.Дж. Европейское общество клинических M инфекционных заболеваний D. Европейское общество клинической микробиологии и инфекционных заболеваний: обновление руководства по лечению инфекции Clostridium difficile. клин. микробиол. Заразить. 2014; 20:1–26. дои: 10.1111/1469-0691. 12418. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

34. Surawicz C.M., Brandt L.J., Binion D.G., Anantakrishnan A.N., Curry S.R., Gilligan P.H., McFarland L.V., Mellow M., Zuckerbraun B.S. Руководство по диагностике, лечению и профилактике инфекций Clostridium difficile. Являюсь. Дж. Гастроэнтерол. 2013; 108: 478–49.8. doi: 10.1038/ajg.2013.4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

35. Каммарота Г., Яниро Г., Чианчи Р., Биббо С., Гасбаррини А., Курро Д. Участие кишечной микробиоты в патогенезе воспалительного заболевания кишечника: потенциал для терапия. Фармакол. тер. 2015; 149:191–212. doi: 10.1016/j.pharmthera.2014.12.006. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

36. Хан И., Улла Н., Чжа Л., Бай Ю., Хан А., Чжао Т., Че Т., Чжан С. Изменение микробиоты кишечника в Воспалительные заболевания кишечника (ВЗК): причина или следствие? Лечение ВЗК, направленное на микробиом кишечника. Возбудители. 2019;8:126. doi: 10.3390/pathogens8030126. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

37. Лопетузо Л.Р., Яниро Г., Аллегретти Дж.Р., Биббо С., Гасбаррини А., Скальдаферри Ф., Каммарота Г. Трансплантация кала при язвенном колите: Текущие доказательства и будущие приложения. Мнение эксперта. биол. тер. 2020; 20: 343–351. doi: 10.1080/14712598.2020.1733964. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

38. Каммарота Г., Яниро Г. FMT при язвенном колите: ближе к поворотной точке. Нац. Преподобный Гастроэнтерол. Гепатол. 2019;16:266–268. doi: 10.1038/s41575-019-0131-0. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

39. Имдад А., Николсон М.Р., Таннер-Смит Э.Э., Закулар Дж.П., Гомес-Дуарте О.Г., Болье Д.Б., Акра С. Трансплантация кала для лечения воспалительного заболевания кишечника. Кокрановская система баз данных. Ред. 2018; 11:CD012774. doi: 10.1002/14651858.CD012774.pub2. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

40. Костелло С.П., Конлон М.А., Эндрюс Дж.М. Трансплантация фекальной микробиоты при язвенном колите — ответ. ДЖАМА. 2019;321:2240–2241. doi: 10. 1001/jama.2019.3950. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

41. Моайеди П., Суретт М.Г., Ким П.Т., Либертуччи Дж., Вулф М., Ониши К., Армстронг Д., Маршалл Дж.К., Кассам З., Райниш В. , и другие. Трансплантация фекальной микробиоты вызывает ремиссию у пациентов с активным язвенным колитом в рандомизированном контролируемом исследовании. Гастроэнтерология. 2015; 149:102–109. doi: 10.1053/j.gastro.2015.04.001. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

42. Tariq R., Disbrow M.B., Dibaise J.K., Orenstein R., Saha S., Solanky D., Loftus E.V., Pardi D.S., Khanna S. Эффективность трансплантации фекальной микробиоты для рецидивирующей, C. Difficile инфекции при воспалительном заболевании кишечника. Воспаление. Кишечник Дис. 2019doi: 10.1093/ibd/izz299. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

43. Яниро Г., Эусеби Л.Х., Блэк С.Дж., Гасбаррини А., Каммарота Г., Форд А.С. Систематический обзор с метаанализом: эффективность трансплантации фекальной микробиоты для лечения синдром раздраженного кишечника. Алимент. Фармакол. тер. 2019;50:240–248. doi: 10.1111/apt.15330. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

44. El-Salhy M., Hatlebakk J.G., Gilja O.H., Brathen Kristoffersen A., Hausken T. Эффективность трансплантации фекальной микробиоты у пациентов с синдромом раздраженного кишечника в рандомизированном, двойном -слепое плацебо-контролируемое исследование. Кишка. 2020;69: 859–867. doi: 10.1136/gutjnl-2019-319630. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Серли М.Дж., Оозир Р. и др. Перенос кишечной микробиоты от худощавых доноров повышает чувствительность к инсулину у лиц с метаболическим синдромом. Гастроэнтерология. 2012; 143:913–916. doi: 10.1053/j.gastro.2012.06.031. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

46. Kootte R.S., Levin E., Salojarvi J., Smits L.P., Hartstra A.V., Udayappan S.D., Hermes G., Bouter K.E., Koopen A.M., Holst J.J., et al. Улучшение чувствительности к инсулину после постных донорских фекалий при метаболическом синдроме обусловлено исходным составом кишечной микробиоты. Клеточный метаб. 2017;26:611–619. doi: 10.1016/j.cmet.2017.09.008. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

47. Zhang Z., Mocanu V., Cai C., Dang J., Slater L., Deehan E.C., Walter J., Madsen K.L. Влияние трансплантации фекальной микробиоты на ожирение и метаболический синдром — систематический обзор. Питательные вещества. 2019;11:2291. дои: 10.3390/nu11102291. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Отдаленные результаты трансплантации фекальной микробиоты у пациентов с циррозом печени. Гастроэнтерология. 2019;156:1921–1923. doi: 10.1053/j.gastro.2019.01.033. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

49. Bajaj J.S., Salzman N.H., Acharya C., Sterling R.K., White MB, Gavis EA, Fagan A., Hayward M., Holtz M.L., Matherly С. и др. Капсулы фекальных микробных трансплантатов безопасны при печеночной энцефалопатии: рандомизированное плацебо-контролируемое исследование фазы 1. Гепатология. 2019;70:1690–1703. doi: 10.1002/hep.30690. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

50. Huttner B.D., de Lastours V., Wassenberg M., Maharshak N., Mauris A., Galperine T., Zanichelli V., Kapel N. , Белланже А., Олеаро Ф. и др. 5-дневный курс пероральных антибиотиков с последующей фекальной трансплантацией для искоренения носительства энтеробактерий с множественной лекарственной устойчивостью: рандомизированное клиническое исследование. клин. микробиол. Заразить. 2019;25:830–838. doi: 10.1016/j.cmi.2018.12.009. [PubMed] [CrossRef] [Академия Google]

51. Канг Д.В., Адамс Дж.Б., Коулман Д.М., Поллард Э.Л., Мальдонадо Дж., МакДонаф-Минс С., Капорасо Дж.Г., Краймальник-Браун Р. Долгосрочная польза терапии переноса микробиоты в отношении симптомов аутизма и кишечной микробиоты. науч. Отчет 2019;9:5821. doi: 10.1038/s41598-019-42183-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

52. Qi X., Li X., Zhao Y., Wu X., Chen F., Ma X., Zhang F., Wu D. Лечение резистентной к стероидам острой кишечной болезни «трансплантат против хозяина» с помощью трансплантации фекальной микробиоты: экспериментальное исследование. Передний. Иммунол. 2018;9:2195. doi: 10.3389/fimmu.2018.02195. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

53. Вудворт М. Х., Карпентьери С., Ситченко К. Л., Крафт К. С. Проблемы выбора фекального донора и скрининга на трансплантацию фекальной микробиоты: обзор. Кишечные микробы. 2017; 8: 225–237. doi: 10.1080/19490976.2017.1286006. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

54. Кассам З., Дюбуа Н.Е., Линг К., Рамакришна Б., Квази Т., Аллегретти Дж.Р., Фишер М., Келли С.Р., Бадри С. ., Панчал П. и др. 512 — Скрининг здоровья доноров на трансплантацию фекальной микробиоты: проспективная оценка 15 317 доноров-кандидатов. Гастроэнтерология. 2019;156:S100–S101. doi: 10.1016/S0016-5085(19)37042-8. [CrossRef] [Google Scholar]

55. Bakken J.S., Polgreen P.M., Beekmann S.E., Riedo F.X., Streit J.A. Подходы к лечению, включая трансплантацию фекальной микробиоты при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile (RCDI) среди врачей-инфекционистов. Анаэроб. 2013;24:20–24. doi: 10.1016/j.anaerobe.2013.08.007. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

56. Эдельштейн С., Доу Дж. Р., Кассам З. В поисках безопасного стула: Канаде нужна универсальная донорская модель. CMAJ может. Мед. доц. JJ L’Assoc. Мед. Может. 2016;188:E431–E432. doi: 10.1503/cmaj.150672. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

57. Одамаки Т., Като К., Сугахара Х., Хашикура Н., Такахаши С., Сяо Дж. З., Абэ Ф., Осава Р. Возрастные изменения состава микробиоты кишечника от новорожденного до столетнего: кросс- секционное исследование. БМС микробиол. 2016;16:90. doi: 10.1186/s12866-016-0708-5. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

58. Fransen F., van Beek A.A., Borghuis T., Aidy S.E., Hugenholtz F., van der Gaast-de Jongh C., Savelkoul H.F.J., Де Йонге М.И., Буксхотен М.В., Смидт Х. и соавт. Старая кишечная микробиота способствует системному воспалению после переноса на безмикробных мышей. Передний. Иммунол. 2017;8:1385. дои: 10.3389/fimmu.2017.01385. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

59. Декер Б.К., Лау А.Ф., Деккер Дж.П., Сполдинг К.Д., Синаи Н., Конлан С., Хендерсон Д.К., Сегре Дж.А., Франк К.М., Палмор Т.Н. Колонизация кишечника медицинского персонала полирезистентными микроорганизмами. клин. микробиол. Заразить. Выключенный. Опубл. Евро. соц. клин. микробиол. Заразить. Дис. 2018;24:82.e81–82.e84. doi: 10.1016/j.cmi.2017.05.010. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

60. Зборомырская Ю., Вила Дж. Усовершенствованная молекулярная диагностика желудочно-кишечных инфекций на основе ПЦР: проблемы и возможности. Эксперт Преподобный Мол. Диагн. 2016; 16: 631–640. дои: 10.1586/14737159.2016.1167599. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

61. Vasilakopoulou A., Karakosta P., Vourli S., Tarpatzi A., Varda P., Kostoula M., Antoniadou A., Pournaras S. Желудочно-кишечный носитель ванкомицина. Устойчивые энтерококки и устойчивые к карбапенемам грамотрицательные бактерии в эндемичных условиях: распространенность, факторы риска и исходы. Передний. Здравоохранение. 2020;8:55. doi: 10.3389/fpubh.2020.00055. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

62. Шеной Э.С., Парас М.Л., Нубари Ф., Валенский Р.П., Хупер Д.К. Естественная история колонизации метициллинрезистентным золотистым стафилококком (MRSA) и ванкомицин- резистентный энтерококк (VRE): систематический обзор. Заражение BMC. Дис. 2014;14:177. дои: 10.1186/1471-2334-14-177. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

63. Яниро Г., Маллиш Б.Х., Келли К.Р., Сокол Х., Кассам З., Нг С., Фишер М., Аллегретти Дж.Р., Масуччи Л., Чжан Ф. и др. Скрининг доноров фекальной микробиоты для трансплантации во время вспышки COVID-19: предложения по срочным обновлениям от международной группы экспертов. Ланцет Гастроэнтерол. Гепатол. 2020;5:430–432. doi: 10.1016/S2468-1253(20)30082-0. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

64. Ван С., Сюй М., Ван В., Цао С., Пяо М., Хан С., Ян Ф., Цао Х. , Ван Б. Систематический обзор: побочные эффекты трансплантации фекальной микробиоты. ПЛОС ОДИН. 2016;11:e0161174. doi: 10.1371/journal.pone.0161174. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

65. Drewes J.L., Corona A., Sanchez U., Fan Y., Hourigan S.K., Weidner M., Sidhu S.D., Simner P.J., Wang H., Timp W., et al. Передача и клиренс потенциальных проканцерогенных бактерий во время трансплантации фекальной микробиоты при рецидивирующей Clostridioides difficile. Взгляд JCI. 2019; 4 doi: 10.1172/jci.insight.130848. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

66. ДеФилипп З., Блум П.П., Торрес Сото М., Мансур М.К., Сатер М.Р.А., Хантли М.Х., Турбетт С., Чанг Р.Т., Чен Ю.Б., Хохманн Э.Л. Лекарственно-резистентная бактериемия E. coli, передаваемая трансплантатом фекальной микробиоты. Н. англ. Дж. Мед. 2019;381:2043–2050. doi: 10.1056/NEJMoa1910437. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

67. Kump P., Wurm P., Grochenig H.P., Wenzl H., Petritsch W., Halwachs B., Wagner M., Stadlbauer V., Eherer A., ​​Hoffmann К.М. и др. Таксономический состав кишечной микробиоты донора является основным фактором, влияющим на эффективность трансплантации фекальной микробиоты при рефрактерном к терапии язвенном колите. Алимент. Фармакол. тер. 2018;47:67–77. doi: 10.1111/apt.14387. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

68. Уилсон Б.К., Ватанен Т., Катфилд В.С., О’Салливан Дж.М. Феномен супердонора при трансплантации фекальной микробиоты. Передний. Клетка. Заразить. микробиол. 2019;9:2. doi: 10.3389/fcimb.2019.00002. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

69. Блэк С.К., Терманини К.М., Агирре О., Хоксворт Дж.С., Сосин М. Трансплантация паренхиматозных органов в 21-м веке. Анна. Перевод Мед. 2018;6:409. doi: 10.21037/атм.2018.09.68. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

70. Барнс Д., Нг К., Смитс С., Зонненбург Дж., Кассам З., Парк К.Т. Конкурсно отобранная трансплантация фекальной микробиоты донора: концентрация и разнообразие бутирата как показатели качества донора. Дж. Педиатр. Гастроэнтерол. Нутр. 2018;67:185–187. doi: 10.1097/MPG.0000000000001940. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

71. Zuo T., Wong S.H., Lam K., Lui R., Cheung K., Tang W., Ching J.Y.L., Chan P.K.S., Chan M.C.W., Wu J.C.Y., и др. др. Перенос бактериофагов при трансплантации фекальной микробиоты при инфекции Clostridium difficile связан с лечением, исходом. Кишка. 2018; 67: 634–643. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [Google Scholar]

72. Ott S.J., Waetzig G.H., Rehman A., Moltzau-Anderson J., Bharti R., Grasis J.A., Cassidy L., Tholey A., Fickenscher H., Seegert D., et al. Эффективность стерильного переноса фекального фильтрата для лечения пациентов с инфекцией Clostridium difficile. Гастроэнтерология. 2017; 152:799–811. doi: 10.1053/j.gastro.2016.11.010. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

73. Emanuelsson F., Claesson B.E., Ljungstrom L., Tvede M., Ung K.A. Трансплантация фекальной микробиоты и бактериотерапия при рецидивирующей инфекции Clostridium difficile: ретроспективная оценка 31 пациента. Сканд. Дж. Заразить. Дис. 2014;46:89–97. doi: 10.3109/00365548.2013.858181. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

74. Petrof E.O., Gloor G.B., Vanner S.J., Weese S.J., Carter D., Daigneault M.C., Brown E.M., Schroeter K., Allen-Vercoe E. Терапия заменой стула для искоренение инфекции Clostridium difficile: «повторное ПООПулирование» кишечника. Микробиом. 2013;1:3. doi: 10.1186/2049-2618-1-3. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

75. Цзоу М., Цзе З., Цуй Б., Ван Х., Фэн К., Цзоу Ю., Чжан С., Ян Х. , Ван Дж., Чжан Ф. и др. Трансплантация фекальной микробиоты приводит к вытеснению бактериального штамма у пациентов с воспалительными заболеваниями кишечника. Открытая биография ФЭБС. 2020;10:41–55. doi: 10.1002/2211-5463.12744. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

76. Paramsothy S., Kamm M.A., Kaakoush N.O., Walsh A.J., van den Bogaerde J., Samuel D., Leong R.W.L., Connor S., Ng W., Paramsothy R., et al. Мультидонорская интенсивная трансплантация фекальной микробиоты при активном язвенном колите: рандомизированное плацебо-контролируемое исследование. Ланцет. 2017; 389:1218–1228. doi: 10.1016/S0140-6736(17)30182-4. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

77. Vermeire S., Joossens M., Verbeke K., Wang J., Machiels K., Sabino J., Ferrante M., Van Assche G., Rutgeerts P. , Raes J. Богатство видов доноров определяет успех трансплантации фекальной микробиоты при воспалительном заболевании кишечника. Колит Дж. Крона. 2016;10:387–394. doi: 10.1093/ecco-jcc/jjv203. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

78. Tian Y., Zhou Y., Huang S., Li J., Zhao K., Li X., Wen X., Li X.A. Трансплантация фекальной микробиоты при язвенном колите: проспективное клиническое исследование. БМК Гастроэнтерол. 2019;19:116. doi: 10.1186/s12876-019-1010-4. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

79. Понсе-Алонсо М., Гарсия-Фернандес С., Агилера Л., Родригес-де-Сантьяго Э., Форуни Дж. Р., Рой Г., DelCampo R., Canton R., Lopez-Sanroman A. P782 Новый тест на совместимость для отбора доноров для трансплантации фекальной микробиоты при язвенном колите. Колит Дж. Крона. 2017;11:S480–S481. дои: 10.1093/ecco-jcc/jjx002.903. [CrossRef] [Google Scholar]

80. Conceicao-Neto N., Deboutte W., Dierckx T., Machiels K., Wang J., Yinda K.C., Maes P., Van Ranst M., Joossens M., Raes Дж. и др. Низкое богатство эукариотических вирусов связано с успехом трансплантации фекальной микробиоты у пациентов с ЯК. Кишка. 2018;67:1558–1559. doi: 10.1136/gutjnl-2017-315281. [Статья PMC бесплатно] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

81. Panebianco C., Andriulli A., Pazienza V. Pharmacomicrobiomics: Использование взаимодействий лекарство-микробиота в противоопухолевой терапии. Микробиом. 2018;6:92. doi: 10.1186/s40168-018-0483-7. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

82. Гопалакришнан В., Спенсер С.Н., Нези Л., Рубен А., Эндрюс М.С., Карпинец Т.В., Прието П.А., Висенте Д., Хоффман К. , Wei S.C., et al. Микробиом кишечника модулирует ответ на иммунотерапию анти-PD-1 у пациентов с меланомой. Наука. 2018; 359:97–103. doi: 10. 1126/science.aan4236. [PMC free article] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Комменсальный микробиом связан с эффективностью анти-PD-1 у пациентов с метастатической меланомой. Наука. 2018;359: 104–108. doi: 10.1126/science.aao3290. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

84. Маллард А. Онкологи используют микробиом в попытке улучшить результаты иммунотерапии. Нац. Преподобный Друг Дисков. 2018;17:153–155. doi: 10.1038/nrd.2018.19. [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

85. Kang D.W., Adams J.B., Gregory A.C., Borody T., Chittick L., Fasano A., Khoruts A., Geis E., Maldonado J., McDonough-Means С. и др. Терапия переноса микробиоты изменяет экосистему кишечника и улучшает симптомы желудочно-кишечного тракта и аутизма: открытое исследование. Микробиом. 2017;5:10. doi: 10.1186/s40168-016-0225-7. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

86. Де Гроот П., Шайтхауэр Т., Баккер Г.Дж., Продан А., Левин Э., Хан М.Т., Херрема Х. , Акерманс М., Серли М.Дж.М., де Брау М. и др. Метаболические характеристики донора определяют влияние трансплантации фекальной микробиоты на чувствительность реципиента к инсулину, расход энергии и время кишечного транзита. Кишка. 2019: 502–512. doi: 10.1136/gutjnl-2019-318320. [Бесплатная статья PMC] [PubMed] [CrossRef] [Google Scholar]

Катетер периферического нерва и помпа для обезболивания (PNC) Стационарная

Всеукраинская детская больница

Врач или поставщик медицинских услуг поместил гибкую трубку (катетер) под кожу вашего ребенка, чтобы уменьшить боль. Трубка называется катетером периферического нерва (ПНК). Один конец трубки находится под кожей вокруг нервов, а другой конец прикреплен к насосу ( Рисунок 1 ). Катетер устанавливается во время операции вашего ребенка, когда он спит или находится под седацией в операционной.

Насос наполнен обезболивающим лекарством. Лекарство проходит через трубку и вызывает онемение нервов, которые посылают болевые сигналы из области операции в мозг. Это блокирует чувство боли. Лекарства из помпы может быть достаточно, чтобы справиться с болью. Вашему ребенку, возможно, потребуется принять другое назначенное обезболивающее, если это необходимо.

Общие побочные эффекты

Лекарство может сделать руку или ногу слабой, тяжелой или вызвать покалывание и онемение. Ощущение исчезнет после того, как пройдет действие обезболивающего. Ваш ребенок может быть не в состоянии двигаться в этой области в течение 1-2 дней после операции.

В это время защитите руку или ногу от травм. Попросите вашего ребенка проверить свою руку или ногу, прежде чем использовать ее или нагружать ее.

Когда пройдет онемение, боль может усилиться.

Как работает помпа

• Катетер соединяется с помпой трубкой. Помпа дает вашему ребенку постоянную инфузию обезболивающего.
• Врач или поставщик медицинских услуг настроит помпу на время и скорость, подходящие для вашего ребенка. Насос ни в коем случае не менять! Это может изменить назначенную норму и дозу, чтобы ваш ребенок не получал слишком много лекарств. У вашего ребенка может возникнуть передозировка, если кто-либо, кроме врача или поставщика медицинских услуг, заменит помпу.
• Вашему ребенку выдадут небольшой мешочек для хранения помпы.
• Помпа подает лекарство на срок до 7 дней.

Если вы находитесь в больнице с PNC, медсестра может заменить пакет, если потребуется больше лекарств. Если вы дома с PNC, снимите трубку и выбросьте помпу и трубку.

Предупреждение

• Инфузионная трубка может намотаться на шею ребенка. Это может привести к удушью (удушению) или смерти.
• НЕ оставляйте инфузионную трубку там, где младенцы или дети могут запутаться в ней.
• Поговорите с поставщиком медицинских услуг или врачом вашего ребенка:
  • Если ваш ребенок раньше запутывался в трубке.
  • Чтобы узнать, что делать, чтобы трубка не намоталась на шею ребенка, например, держать трубку как можно дальше от ребенка.
  • Любые другие опасения, связанные с риском удушения инфузионной трубкой.
• Если ваш ребенок травмирован инфузионной трубкой, сообщите об этом в FDA. Ваш отчет может содержать информацию, которая поможет повысить безопасность пациентов. Веб-сайт для создания отчета:  https://www.accessdata.fda.gov/scripts/medwatch/index.cfm?action=reporting.home

.

Уход за кожей

• На трубку будет наложена прозрачная повязка, чтобы она оставалась чистой и оставалась на месте. Держите повязку на месте до тех пор, пока у вашего ребенка есть PNC. Держите его чистым и сухим.
• Если трубка выпадет, ее нельзя вставить обратно.
• Во время PNC ваш ребенок должен принимать ванну только с губкой. Аккуратно промокните прозрачную повязку насухо, если она намокнет.
• Ваш ребенок может лежать на руке или ноге, в которую вставлен катетер. Не тяните за катетер, чтобы он не вышел.

Уход за помпой

• Держите помпу сухой.
• Убедитесь, что белый зажим на трубке рядом с насосом открыт.
• Сумку нужно будет везде носить с собой.

Извлечение трубки

Удаление трубки зависит от того, находитесь ли вы в больнице (стационар) или дома (амбулаторно).

Для стационарного PNC:

1. Медсестра или врач Pain Team удалит катетер вашего ребенка. Они снимут прозрачную повязку. Затем, держа трубку близко к коже, осторожно вытягивают ее.
2. Пластырь ^® или другое покрытие будет наложено на место, где была удалена трубка.
3. Вымойте руки и снимите пластырь ^® на следующий день. Осмотрите область на наличие покраснения, припухлости или выделения.

Для амбулаторного PNC:

1. Мойте руки теплой водой с мылом не менее 15 секунд. Смойте водой и высушите полотенцем.
2. Снимите прозрачную повязку, отогнув 1 край. Ослабьте его вокруг места, где трубка входит в кожу.
3. Держите трубку близко к коже и осторожно потяните. Трубка должна выйти легко. Конец трубки имеет черный наконечник, так что вы знаете, что она полностью вынута. Ни в коем случае не обрезайте трубку.
4. Наложите лейкопластырь ^® или другое покрытие на место, где была удалена трубка.
5. Выбросьте трубку, помпу и повязку в мешок для мусора.
6. Еще раз вымойте руки теплой водой с мылом. Промойте и высушите полотенцем.
7. Снимите пластырь ^® на следующий день и осмотрите участок на наличие покраснения, отека или выделения.

Когда следует звонить врачу

Обычно небольшое количество жидкости вытекает из места установки трубки. Позвоните врачу или поставщику медицинских услуг, если:

• Трубка выходит из-под кожи
• Жидкость, вытекающая из места, мутная или имеет цвет
• Повязка в том месте, где трубка входит в кожу, настолько влажная, что начинает отрываться
• Покраснение, боль или повышение температуры в месте введения трубки в кожу
• У вашего ребенка:
  • Онемение вокруг губ
  • Звон в ушах
  • Металлический привкус во рту
  • Затуманенное зрение или головокружение
  • Лихорадка выше 102° по Фаренгейту (F) или 38,9° по Цельсию (C) через рот

Если у вас есть вопросы о трубке или помпе, позвоните по телефону (614) 690-1715.